Микроскопия учебное пособие

Remedium.ru в вашем смартфоне.

Люминесцентная микроскопия: Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии». – М.–Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2008. – 36 стр.

В рамках реализации Фондом «Российское здравоохранение» проекта «Профилактика, диагностика, лечение туберкулеза и СПИДа, компонент «туберкулез», финансируемого из средств займа МБРР, а также Программы Глобального фонда «Развитие стратегии лечения населения РФ, уязвимого к туберкулезу» были подготовлены комплекты учебных материалов, предназначенных для специалистов по лабораторной диагностике туберкулеза, проходящих обучение на курсах: «Выявление туберкулеза методом микроскопии» и «Культуральные методы диагностики туберкулеза». Настоящее учебное пособие может быть использовано при проведении указанных курсов обучения в качестве приложения к базовым учебным пособиям: «Выявление туберкулеза методом микроскопии» и «Культуральные методы диагностики туберкулеза».

При проведении обучения для лабораторных специалистов, выполняющих в своих лабораториях исследования люминесцентным методом, в программу курса обучения включается раздел по люминесцентной микроскопии. В этом случае дополнительно к базовому учебному пособию используется также настоящее учебное пособие «Люминесцентная микроскопия».

Учебное пособие «Люминесцентная микроскопия» предназначено для обучения лабораторных специалистов (в первую очередь – врачей-бактериологов специализированных бактериологических лабораторий противотуберкулезных учреждений РФ) технологии проведения микроскопического исследования для диагностики кислотоустойчивых микобактерий методом люминесцентной микроскопии. Учебное пособие «Люминесцентная микроскопия» включает в себя описание проведения процедур, связанных с люминесцентной микроскопией для выявления кислотоустойчивых микобактерий, в том числе детальное описание принципов работы, устройства и ухода за люминесцентным микроскопом.

Учебные материалы по организации исследований, безопасности проведения исследований, сбору, хранению, транспортировке материала, обеспечению качества исследований приводятся в соответствующих разделах базовых модулей. Разработчики учебного пособия выражают глубокую благодарность специалистам ВОЗ за оказанную помощь и техническую поддержку в подготовке учебного пособия.
Разработчики учебного пособия выражают глубокую благодарность за высказанные замечания и пожелания всем членам тематической рабочей группы «Лабораторная диагностика туберкулеза», а также российским и зарубежным экспертам и специалистам, принимавшим участие в рецензировании и обсуждении настоящего учебного пособия.

На практике используются два метода микроскопического исследования диагностического материала с целью выявления кислотоустойчивых микобактерий (КУМ):

метод прямой микроскопии, когда мазок приготавливается непосредственно из необработанного (нативного) диагностического материала или его осадка (в случае жидкого материала);

метод микроскопии мазка из обработанного осадка материала, подготовленного для культурального исследования путем обработки разжижающими и деконтаминирующими средствами и последующего центрифугирования при 3000 g в безопасной центрифуге (такие возможности, как правило, имеются только в специализированных бактериологических лабораториях).

Первый, наименее затратный метод широко применяется в тех лабораториях, в которых производится только микроскопия мазков с окраской препаратов по методу Циля–Нильсена и исследованием их в обычном световом микроскопе проходящего света (клинико-диагностические лаборатории общей лечебной сети). Окраска мазков люминесцентным методом чаще всего используется в бактериологических лабораториях специализированных противотуберкулезных учреждений и является альтернативой унифицированному методу окраски по Цилю–Нильсену.

Метод люминесцентной микроскопии для выявления кислотоустойчивых микобактерий, так же как и метод Циля–Нильсена, основан на проникновении в клетку карболового производного флуоресцентного красителя аурамина 0. Производное аурамина имеет ряд преимуществ перед карболовым фуксином при селективной окраске микобактерий: по-видимому, аурамин более прочно, чем фуксин, связывается с клеточными структурами микобактерий, обеспечивая яркое люминесцентное свечение окрашенной флуоресцентным красителем микобактериальной клетки, что позволяет обнаружить ее при меньшем увеличении микроскопа. Поэтому при просмотре одного и того же количества полей в случае люминесцентной микроскопии при использовании увеличения в пределах 200?–630? фактическая площадь просмотренного мазка приблизительно в 2,5–25 раз больше, чем при увеличении 1000?, применяемом при обычной микроскопии проходящего света. Это приводит к большему количеству находок при меньшей затрате времени. По литературным данным,
люминесцентная микроскопия для выявления КУМ более эффективна, чем обычная
микроскопия проходящего света.

Эффективность люминесцентной микроскопии во многом зависит от правильного выполнения процедуры окрашивания и наладки микроскопа. Качественная и эффективная окраска флуорохромными красителями требует обязательного соблюдения кислотности (рН) мазка, а также освобождения микобактерий от окружающей их слизи, которая препятствует проникновению красителя в микробную клетку. Несоблюдение этих условий приводит к снижению эффективности люминесцентной микроскопии и получению ложноотрицательных результатов исследования. Поэтому окраску люминесцентными красителями рекомендуется применять при исследовании мазков, приготовленных из осадка материала, обработанного для культурального исследования и нейтрализованного после деконтаминации. В связи с этим данный метод обычно используется только в бактериологических лабораториях, которые помимо микроскопического выполняют еще и культуральное исследование, при этом мазок и посев производятся параллельно и обязательно из одной и той же порции материала.

www.remedium.ru

Люминесцентная микроскопия

Транскрипт

1 Министерство здравоохранения и социального развития Российской Федерации Центральный НИИ туберкулеза РАМН Фонд «Российское здравоохранение» Рекомендуется Учебно-методическим объединением по медицинскому и фармацевтическому образованию вузов России в качестве учебного пособия для системы послевузовского профессионального образования врачей Люминесцентная микроскопия Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии» Москва 2008

2 УДК (078) ББК я75 Л94 Настоящее учебное пособие подготовили: В.И. Голышевская доктор медицинских наук, профессор, руководитель отдела микробиологии ЦНИИТ РАМН О.В. Егорова кандидат технических наук, член Нью-Йоркской академии наук, эксперт Госстандарта по оптическим приборам Э.В. Севастьянова кандидат технических наук, старший научный сотрудник отдела микробиологии ЦНИИТ РАМН М.В. Шульгина доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник отдела стандартизации и контроля качества клинических лабораторных исследований ГНИЦ ПМ Л94 Люминесцентная микроскопия: Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии». М. Тверь: ООО «Издательство «Триада», стр. ББК я75 При подготовке учебного пособия использованы следующие руководства: 1. Приложение 11 к Приказу МЗ РФ 109 от г. «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации». 2. Лабораторная служба в программах борьбы с туберкулезом. Часть II. Микроскопия. Всемирная организация здравоохранения, Настоящее учебное пособие разработано и издано по инициативе и при технической и финансовой поддержке Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) и при поддержке Агентства США по международному развитию (USAID). ISBN Коллектив авторов Оформление ООО «Издательство «Триада», 2008 Люминесцентная микроскопия

3 Оглавление Предисловие. 4 Введение Принцип метода люминесцентной микроскопии 1.1. Общие понятия Метод люминесцентной микроскопии для выявления КУМ Приготовление препаратов для люминесцентной микроскопии Окраска препаратов для люминесцентной микроскопии 3.1. Оборудование и реактивы для окраски флуорохромными красителями Метод окраски аурамином ОО и родамином С Метод окраски аурамином О Устройство люминесцентного микроскопа Техника микроскопического исследования препаратов 5.1. Оборудование и реактивы для проведения микроскопического исследования препаратов, окрашенных флуорохромными красителями Порядок подготовки микроскопа и проведения микроскопического исследования препаратов Учет результатов микроскопического исследования при окраске препаратов флуорохромными красителями Хранение препаратов. 36 Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии» 3

4 Предисловие В рамках реализации Фондом «Российское здравоохранение» проекта «Профилактика, диагностика, лечение туберкулеза и СПИДа, компонент «туберкулез», финансируемого из средств займа МБРР, а также Программы Глобального фонда «Развитие стратегии лечения населения РФ, уязвимого к туберкулезу» были подготовлены комплекты учебных материалов, предназначенных для специалистов по лабораторной диагностике туберкулеза, проходящих обучение на курсах: «Выявление туберкулеза методом микроскопии» и «Культуральные методы диагностики туберкулеза». Настоящее учебное пособие может быть использовано при проведении указанных курсов обучения в качестве приложения к базовым учебным пособиям: «Выявление туберкулеза методом микроскопии» и «Культуральные методы диагностики туберкулеза». При проведении обучения для лабораторных специалистов, выполняющих в своих лабораториях исследования люминесцентным методом, в программу курса обучения включается раздел по люминесцентной микроскопии. В этом случае дополнительно к базовому учебному пособию используется также настоящее учебное пособие «Люминесцентная микроскопия». Учебное пособие «Люминесцентная микроскопия» предназначено для обучения лабораторных специалистов (в первую очередь врачей-бактериологов специализированных бактериологических лабораторий противотуберкулезных учреждений РФ) технологии проведения микроскопического исследования для диагностики кислотоустойчивых микобактерий методом люминесцентной микроскопии. Учебное пособие «Люминесцентная микроскопия» включает в себя описание проведения процедур, связанных с люминесцентной микроскопией для выявления кислотоустойчивых микобактерий, в том числе детальное описание принципов работы, устройства и ухода за люминесцентным микроскопом. Учебные материалы по организации исследований, безопасности проведения исследований, сбору, хранению, транспортировке материала, обеспечению качества исследований приводятся в соответствующих разделах базовых модулей. Разработчики учебного пособия выражают глубокую благодарность специалистам ВОЗ за оказанную помощь и техническую поддержку в подготовке учебного пособия. Разработчики учебного пособия выражают глубокую благодарность за высказанные замечания и пожелания всем членам тематической рабочей группы «Лабораторная диагностика туберкулеза», а также российским и зарубежным экспертам и специалистам, принимавшим участие в рецензировании и обсуждении настоящего учебного пособия. 4 Люминесцентная микроскопия

5 Введение На практике используются два метода микроскопического исследования диагностического материала с целью выявления кислотоустойчивых микобактерий (КУМ): метод прямой микроскопии, когда мазок приготавливается непосредственно из необработанного (нативного) диагностического материала или его осадка (в случае жидкого материала); метод микроскопии мазка из обработанного осадка материала, подготовленного для культурального исследования путем обработки разжижающими и деконтаминирующими средствами и последующего центрифугирования при 3000 g в безопасной центрифуге (такие возможности, как правило, имеются только в специализированных бактериологических лабораториях). Первый, наименее затратный метод широко применяется в тех лабораториях, в которых производится только микроскопия мазков с окраской препаратов по методу Циля Нильсена и исследованием их в обычном световом микроскопе проходящего света (клинико-диагностические лаборатории общей лечебной сети). Окраска мазков люминесцентным методом чаще всего используется в бактериологических лабораториях специализированных противотуберкулезных учреждений и является альтернативой унифицированному методу окраски по Цилю Нильсену. Метод люминесцентной микроскопии для выявления кислотоустойчивых микобактерий, так же как и метод Циля Нильсена, основан на проникновении в клетку карболового производного флуоресцентного красителя аурамина 0. Производное аурамина имеет ряд преимуществ перед карболовым фуксином при селективной окраске микобактерий: по-видимому, аурамин более прочно, чем фуксин, связывается с клеточными структурами микобактерий, обеспечивая яркое люминесцентное свечение окрашенной флуоресцентным красителем микобактериальной клетки, что позволяет обнаружить ее при меньшем увеличении микроскопа. Поэтому при просмотре одного и того же количества полей в случае люминесцентной микроскопии при использовании увеличения в пределах фактическая площадь просмотренного мазка приблизительно в 2,5 25 раз больше, чем при увеличении 1000, применяемом при обычной микроскопии проходящего света. Это приводит к большему количеству находок при меньшей затрате времени. По литературным данным, люминесцентная микроскопия для выявления КУМ более эффективна, чем обычная микроскопия проходящего света. Эффективность люминесцентной микроскопии во многом зависит от правильного выполнения процедуры окрашивания и наладки микроскопа. Качественная и эффективная окраска флуорохромными красителями требует обязательного соблюдения кислотности (рн) мазка, а также освобождения микобактерий от окружающей их слизи, которая препятствует проникновению красителя в микробную клетку. Несоблюдение этих условий приводит к снижению эффективности люминесцентной микроскопии и получению ложноотрицательных результатов исследования. Поэтому окраску люминесцентными красителями рекомендуется применять при исследовании мазков, приготовленных из осадка материала, обработанного для культурального исследования и нейтрализованного после деконтаминации. В связи с этим дан- Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии» 5

6 ный метод обычно используется только в бактериологических лабораториях, которые помимо микроскопического выполняют еще и культуральное исследование, при этом мазок и посев производятся параллельно и обязательно из одной и той же порции материала. Вопросы 1. Перечислите основные методы микроскопического исследования, проводимого с целью выявления КУМ. В каких случаях они применяются? 2. Почему люминесцентную микроскопию не рекомендуется применять для исследования мазков из нативной мокроты? 6 Люминесцентная микроскопия

7 Принцип метода люминесцентной микроскопии Общие понятия Люминесценция это способность вещества испускать излучение при воздействии на него внешней энергии (энергии возбуждения). Излучение люминесценции это избыток излучения, превышающий тепловое излучение вещества, которое возникает при данной температуре. Длительность излучения люминесценции значительно превышает период световых волн. Излучение люминесценции зависит от природы вещества (объекта) и характеризуется: спектральным распределением плотности лучистого потока, т. е. шириной спектральной полосы пропускания, величинами коэффициента излучения и максимальной длиной волны, при которой происходит излучение; выходом люминесценции, т. е. отношением излучаемой энергии к поглощенной, на который влияет степень тушения излучения, зависящая от структуры вещества и от внешних условий; временем затухания. Фотолюминесценция это свечение объектов, возникающее в результате поглощенной ими лучистой энергии. Вследствие некоторых причин свет люминесценции обладает большей длиной волны, чем поглощенный (правило Стокса). Поэтому люминесценцию выгодно возбуждать либо ультрафиолетовыми лучами ( нм), либо сине-фиолетовыми. В обоих случаях возникает свечение в цветовой гамме всего или большей части видимого спектра. Спектр флуоресценции остается неизменным при любой длине волны возбуждающего излучения. Этот вид люминесценции носит название наведенной (вторичной) в отличие от первичной собственной флуоресценции, нередко проявляемой витаминами, многими пигментами, некоторыми жировыми веществами и антибиотиками, встречающимися в живых организмах, некоторыми продуктами нормального и патологического обмена. Фотолюминесценцию условно подразделяют на: флуоресценцию, то есть свечение со временем затухания, не превышающим 10 8 секунд; фосфоресценцию, которая продолжается более длительное время после прекращения возбуждения. Флуорохромы красители, не вызывающие сильной окраски объектов в обычном свете, но флуоресцирующие при облучении ультрафиолетовыми лучами. Из синтетических флуорохромов наилучшие результаты дают акридин оранжевый, корифосфин, примулин, родамин, ФИТЦ (флуоресцеинизотиоцианат), которые обычно применяют в виде слабых водных растворов. Для выявления кислотоустойчивых микобактерий применяют метод люминесцентной микроскопии, называемый флуорохромированием. Метод флуорохромирования почти не отли- Объект поглощает синий свет зеленый свет желтый свет Объект светится зеленый свет желтый свет красно-оранжевый свет Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии» 7

8 Синий свет возбуждения Рис. 1 Схема свечения маркеров Зеленый свет эмиссии чается от общеизвестных методов окрашивания анилиновыми красителями, хотя и требует обычно меньшего времени (доли минуты). Для люминесцентных методов исследования большую роль играет обработка препарата специальными реактивами флуорохромами. Отдельные молекулы вещества обладают способностью на короткое время поглощать свет, а затем испускать его в другой длине волны, как правило, сдвинутой в сторону красного света (закон Стокса 1 ), превышая длину волны поглощаемого света возбуждения на нм. Различные флуорохромы (маркеры) обладают в зависимости от вида совершенно определенными спектрами поглощения, зависящими от внутреннего строения флуоресцирующих молекул, а иногда и от их окружения. Поглощается не каждый фотон облучающего света, а лишь некоторая их часть. Кроме того, не все захваченные фотоны снова излучают свет. Хорошие маркирующие вещества имеют высокий «квантовый выход», характеризующий соотношение между испущенными и поглощенными фотонами. Этот эффект является очень полезным для микроскопии. Маркированный таким образом препарат освещается возбуждающим выделенным, например, синим светом и наблюдается уже в свете, сформированном с помощью запирающего светофильтра, не пропускающего полностью, например, длинноволновый зеленый, желтый и красный свет. В случае, когда объект не окрашен специальными красителями, ультрафиолетовый свет, проходя через объектив и попадая на препарат, поглощается молекулярными структурами объекта и остается невидимым или почти невидимым для человеческого глаза. Таким образом, маркированные структуры, например части клеточной структуры, высвечиваются зеленым светом на темном фоне (рис. 1). Люминесцентная микроскопия. Метод основан на наблюдении светящихся микроскопических объектов на общем темном фоне препарата. По сравнению с методом световой микроскопии в проходящем свете он обладает рядом преимуществ: высокая степень контрастности цветных светящихся объектов на темном фоне, значительно большая площадь просматриваемого поля зрения за счет использования меньших увеличений микроскопа, экономия времени и др Метод люминесцентной микроскопии для выявления КУМ При обработке диагностического материала препарата люминесцентными красителями (карболовое производное флуоресцентного красителя аурамина 0 и др.), которые связываются с воскоподобными структурами микробной клетки и проника- 1 Правило Стокса (закон Стокса) установлено Дж. Г. Стоксом в 1852 г. Правило утверждает, что длина волны фотолюминесценции больше, чем длина волны возбуждающего света. Согласно этому энергия фотонов люминесценции меньше энергии фотонов возбуждающего света. Правило Стокса выполняется не всегда, во многих случаях в спектре фотолюминесценции наблюдаются антистоксовы линии, длины волн которых короче возбуждающей. Правило широко известно в формулировке немецкого физика Э. Ломмеля: максимум спектра люминесценции сдвинут по отношению к максимуму спектра поглощения в сторону более длинных волн. 8 Люминесцентная микроскопия

9 ют в ее цитоплазму, последующее облучение препарата возбуждающим источником света (определенный спектр ультрафиолетового излучения) вызывает оранжевое или ярко-желтое свечение окрашенных клеток микобактерий на черном или темно-зеленом фоне. Указанная цветовая маркировка объекта на темном фоне способствует более быстрому распознаванию объекта. В связи с этим окрашенные флуорохромными красителями препараты обычно исследуются при увеличении в пределах , тогда как окрашенные фуксином при увеличении Разница в увеличении позволяет микроскописту видеть в люминесцентном микроскопе поле зрения большего диаметра, чем в обычном микроскопе, и, соответственно, просматривать большую площадь мазка в одном поле зрения. Например, по сравнению с увеличением 1000, при использовании увеличения 400, линейное поле на предмете (диаметр поля зрения мазка) увеличивается с 0,18 до 0,45 мм, то есть в 2,5 раза, а площадь просматриваемого поля зрения возрастает в 6,36 раза с 0,025 до 0,159 мм 2 (табл. 1). Указанная особенность люминесцентной микроскопии существенно сокращает время, необходимое для просмотра мазка. Подсчитано, что, если микроскопическое исследование необходимой площади мазка при окраске по Цилю Нильсену составляет приблизительно минут, то для исследования той же площади мазка методом люминесцентной микроскопии потребуется только 2 3 минуты (табл. 1). Т а б л и ц а 1 Сравнение времени, затраченного на просмотр отрицательных мазков с применением люминесцентного и обычного микроскопа проходящего света Условия Люминесцентная микроскопия Микроскопия проходящего света Увеличение Линейное поле на предмете (диаметр поля зрения мазка), мм 400 объектив 40, окуляр 10 /18 0,45 0,18 Площадь одного поля зрения мазка, мм 2 0,159 0,025 Количество просматриваемых полей зрения Общая площадь просмотренного мазка (по количеству полей), мм 2 7,95 7,50 Условное время просмотра одного поля зрения*, с Время, затраченное на просмотр одного мазка*, мин 3 3 2, объектив 100, окуляр 10 /18 * Затраченное время может меняться в зависимости от типа микроскопа, а также условий конкретной лаборатории. Наряду с этим при люминесцентной микроскопии отмечается значительно большая резкость и контрастность микроскопической картины, что повышает комфортность микроскопического исследования. Для глаза исследователя намного лег- Учебное пособие для проведения курсов обучения: «Культуральные методы диагностики туберкулеза», «Выявление туберкулеза методом микроскопии» 9

10 че обнаружить флуоресцирующие оранжевые или ярко-желтые микобактерии на темном (при гашении фона метиленовым синим или перманганатом калия) или темно-красном (при гашении фона акридиновым оранжевым) фоне, чем выявить красные микобактерии на ярко-голубом фоне клеточного детрита при окраске по Цилю Нильсену. Это делает метод люминесцентной микроскопии особенно ценным при исследовании олигобациллярного материала. Чувствительность люминесцентной микроскопии, особенно в сочетании с методом обогащения диагностического материала (микроскопия осадка), приближается к чувствительности метода посева. Указанные преимущества позволяют использовать люминесцентную микроскопию в лабораториях, выполняющих ежедневно большое число исследований (порядка 30 и более), в целях ускорения процедуры микроскопии. Однако необходимо учитывать, что при люминесцентной микроскопии существует вероятность получения ложноположительных результатов. При этом использование для люминесцентной микроскопии объектива с меньшим увеличением (по сравнению с обычным микроскопом проходящего света) не оказывает существенного влияния на возможность получения ложноположительных результатов. Гораздо большее значение имеет сочетание запирающих и возбуждающих светофильтров, то есть цвет свечения, а также наличие или отсутствие фонового свечения, которые влияют на общий цвет свечения, что и может явиться основной проблемой. Поэтому во всех сомнительных случаях микроскопической картины для контроля следует использовать микроскопию мазка, окрашенного повторно по методу Циля Нильсена. Вопросы 1. Опишите принцип метода люминесцентной микроскопии. 2. Каковы преимущества люминесцентной микроскопии по сравнению с обычной микроскопией? 10 Люминесцентная микроскопия

11 Приготовление препаратов для люминесцентной микроскопии 2 Мазки для люминесцентной микроскопии рекомендуется готовить из осадка диагностического материала, полученного после проведения специальной обработки материала с последующим центрифугированием при 3000 g в антиаэрозольной рефрижераторной центрифуге. Методика обработки материала и подготовки осадка изложена в базовом учебном пособии «Культуральные методы диагностики туберкулеза». Перед нанесением материала осадка на предметное стекло необходимо проверить уровень ph осадка материала и добиться его нейтрального значения рн (6,8 7,0). Уровень рн определяют с помощью бумажной индикаторной полоски. При щелочной реакции отобранного для приготовления мазка материала (ph > 7,0) к нему следует добавить 1 2 капли 10% раствора соляной кислоты; при кислой реакции (ph I agree.

docplayer.ru

Зевайль, Томас: Трёхмерная электронная микроскопия в реальном времени. Учебное пособие

Аннотация к книге «Трёхмерная электронная микроскопия в реальном времени. Учебное пособие»

Книга написана двумя признанными авторитетами в области физической химии и биологии — проф. Ахмедом Зевайлем из Калифорнийского Технологического Института и проф. Джоном Томасом из Оксфордского Университета.
Учебное пособие посвящено последним достижениям в электронной микроскопии, которые позволяют современным ученым проводить наблюдения субнанометровых объектов и химических реакций не просто в 3D пространстве, но ещё и в динамике, фиксируя в реальном времени сам процесс перемещения атомов и их взаимодействия друг с другом. Рассмотрены физические принципы, позволяющие проводить прямое наблюдение органических и неорганических объектов на атомарном масштабе и их поведения в ультракоротких временных диапазонах.
На конкретных примерах рассмотрены возможности визуализации объектов с использованием как отдельных методов электронной микроскопии, так и их сочетания, что в свою очередь существенно повышает информативность и достоверность получаемых данных.
Основная идея авторов — показать, что электронная микроскопия микро- и наномира, даже в самых, казалось бы, фантастических задачах и исследованиях, не ограничивается более лишь статичной картинкой, позволяя ученым заглянуть гораздо глубже, как в пространственных масштабах, так и в динамике.
Книга будет чрезвычайно полезной и интересной для всех специалистов и, в том числе, для студентов, чьи профессиональные интересы так или иначе связаны с нанотехнологиями.

Ваше право

Правовые консультации